Laboratorio Finca España

Medición de ácidos biliares

  • Se extrae la sangre tras doce horas de ayuno.
  • Se le administra un poco de comida de alta calidad, una o dos cucharadas de comida de lata.
  • Dos horas después de dar la comida se le extrae sangre para medir los ácidos biliares post-pandriales.

Medición del cortisol por supresión con dexametasona a dosis bajas

  • Se extrae sangre para determinar los niveles de cortisol basal.
  • Se administrar 0,01 mg/kg i.v. de dexametasona (en perro), en el caso de razas pequeñas se recomienda diluirla en suero salino fisiológico (1:10) para una correcta dosificación.
  • Tomar una muestra de sangre a las cuatro horas y a las ocho horas de la administración de dexametasona para valorar el cortisol post-depresión.
  • Équidos
  • Se extrae sangre para medir los niveles de cortisol basal.
  • Se administra 0,04 mg/kg i.m
  • Extraer sangre a las cuatro horas y a las doce horas tras la administración para la medición del cortisol.

Medición del cortisol por supresión con dexametasona a dosis altas

  • Se extrae sangre para la determinación del cortisol basal.
  • Se administra 0,1 mg/kg i.v. de dexametasona (tanto en perro como en gato).
  • Se extrae sangre a las cuatro horas y a las ocho horas tras la administración para valorar el cortisol post-depresión.

Medición del cortisol por estimulación con ACTH

La estimulación con ACTH sintética es el método recomendado:

Perro

  • Se extrae sangre al animal a primera hora de la mañana, después de doce horas de ayuno para medir el cortisol basal.
  • Se administran 5 microgramos/kg i.m de ACTH sintética (Nuvacthec o Cortrosyn).
  • Extraer sangre una hora después para medir el cortisol.

Gato

  • Se extrae sangre para medir los niveles de cortisol basal.
  • Se administran 5 microgramos/kg i.v de ACTH sintética (Nuvacthec® o Cortrosyn®).
  • Se extrae sangre a los treinta minutos y a los sesenta minutos post-administración para medir los niveles de cortisol.

Estimulación con gel de ACTH

Perro y gato

  • Se extrae sangre para medir el cortisol basal.
  • Se administran 2,2 U/kg de ACTH gel i.m (Acthar 40 U/ml).
  • Se extrae sangre a una hora y dos horas después de la administración de ACTH.

Équidos

  • Se extrae sangre para medir el cortisol basal.
  • Se administra 1 U.I./kg de ACTH gel i.m.
  • Se extrae sangre después de ocho horas para medir el cortisol tras la estimulación.

Medición del cortisol combinando la supresión con dexametasona a dosis altas y estimulación con ACTH

  • Se extrae sangre para medir los niveles de cortisol
  • Se administra 0,1 mg/kg i.v. de dexametasona.
  • Se extrae sangre pasadas cuatro horas.
  • Se administra ACTH exógena a razón de 0,25 mg/perro i.m (Nuvacthec o Cortrosyn).
  • Se extrae sangre pasada una hora en el caso del perro, o si se trata de un gato a los treinta y a los sesenta minutos post-administración.

Medición de la T4 total y la TSH

Se deben realizar controles de los niveles de T4 total y de TSH después del primer mes de tratamiento.

Protocolo 1: extraer sangre antes de administrar la dosis diaria para medir la concentración mínima y volver a extraer sangre después de seis horas para medir la concentración máxima.

Protocolo 2: extraer sangre a las seis horas de la administración de la medicación para medir la concentración máxima, y volver a extraer al día siguiente, antes de dar la medicación para medir la concentración mínima.

Si las concentraciones de T4 total y TSH no son las adecuadas, aumentar la medicación en 1/4 y volver a medir pasado un mes.

Medición de la T4 total mediante estimulación con TSHrh

  • Se extrae sangre para medir los niveles basales.
  • Después se administra 75 μg/perro vía i.v. de TSHrh (Thyrogen: tirotropina recombinante humana).
  • Se vuelve a extraer sangre a las seis horas de la administración.

Medición de la T4 total mediante supresión con T3

  • Se extrae sangre para medir los niveles basales de T4 y T3.
  • Después se administra T3 o liotironina (Cytomel) a razón de 25 μg/animal v.o. cada ocho horas, siendo tres tomas diarias durante dos días (seis dosis) y una séptima dosis a primera hora de la mañana del tercer día.
  • Extraemos sangre a las 2-4 horas de la última toma para medir los niveles de T4 y T3.

Medición de la creatinina en orina

Se toman tres muestras de orina en tres días consecutivos, realizando una supresión con dexametasona entre el segundo y el tercer día:

  • Día 1 Se toma la primera orina de la mañana como muestra.
  • Día 2 Se toma la primera orina de la mañana como muestra.

Después de tomar de orina llevamos a cabo la supresión con dexametasona administrando 0.1 mg/kg v.o. cada ocho horas a lo largo de ese día (en total tres dosis).

  • Día 3 Se toma la primera orina de la mañana como muestra.

Medición de la relaxina

  • Extraer sangre a los 21 días de la monta y repetir una semana después por si hubiera una fecundación tardía.
  • Puede haber falsos negativos en los casos de camadas muy pequeñas.

Medición de la progesterona

Para la detección del momento de la ovulación:

  • Primero se realiza un frotis vaginal entre el quinto y sexto día de celo y cuando las células queratinizadas estén por encima del 50-60% se extrae sangre para determinar la concentración de progesterona.
  • Después se toman muestras de sangre cada dos días hasta que los valores de progesterona estén por encima de 2 ng/ml, que corresponde al pico de LH, la ovulación se producirá dentro de las próximas 24 -48 horas.
  • Continuar midiendo diariamente las concentraciones de progesterona hasta que ésta esté por encima de los 10 ng/ml para confirmar la ovulación.
  • Cubrir a la hembra o inseminarla 24-48h después.

Para la detección del síndrome del remanente ovárico:

  • Durante el celo se administra HCG a razón de 500-1.000 UI i.m en perras y 250 UI i.m en gatas. También se puede administrar GnRH, inyectando 2μg/kg i.m en el caso de las perras y 25 μg/gato i.m para gatas.
  • Pasadas 2-3 semanas se extrae sangre para medir los niveles de progesterona, si hay restos de tejido funcional su concentración estará por encima de 2 ng/ml.

Medición de la testosterona

Los niveles de testosterona en machos enteros varían mucho, por esta razón se recomienda realizar un protocolo de estimulación con GnRH o HCG

Estimulación con GnRH

  • Se extrae sangre para medir los niveles de testosterona basal.
  • Se administra 2,2μg/kg i.m en perros y 25μg/gato i.m en gatos
  • Se extrae sangre tras una hora para medir la testosterona post-estimulación.

Estimulación con HCG

  • Se extrae sangre para medir los niveles de testosterona basal.
  • Se administra 44 UI/kg i.m. en perro o 250 μg/gato i.m en gatos
  • Se extrae sangre pasadas cuatro horas para medir la testosterona post-estimulación.

Puede consultar también:

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